动物生理学实验

第一部分 总论 3

1绪论 3

1.1 动物生理学及实验课程的教学内容和目标 3

1.2 动物生理学实验及其方法 3

1.3 动物生理学实验课的要求 4

1.4 动物生理学实验报告的撰写 5

2动物生理学实验基本技术 7

2.1 动物生理学实验常用手术器械及消毒方法 7

2.2 常用实验动物及其选择 10

2.3 实验动物的编号、抓拿和保定方法 13

2.4 实验动物的给药方法 17

2.5 动物的麻醉 20

2.6 组织分离和插管技术 23

2.7 实验动物的采（取）血与处死方法 26

2.8 动物实验意外事故的处理 29

3综合性实验设计及研究型实验的基础知识 31

3.1 动物生理学实验设计 31

3.2 实验研究论文的撰写与答辩 38

第二部分 基础实验 43

实验1坐骨神经-腓肠肌标本制备 43

实验2刺激强度与骨骼肌收缩的关系 47

实验3刺激频率与骨骼肌收缩的关系 50

实验4神经干复合动作电位及其传导速度的测定 54

实验5神经干动作电位、肌电及骨骼肌收缩曲线的综合观察 58

实验6反射弧分析与脊髓反射 60

实验7大脑皮层运动区的功能定位 63

实验8去大脑僵直 66

实验9破坏动物一侧迷路的效应 69

实验10出血时间、凝血时间的测定 71

实验11红细胞沉降率的测定 73

实验12血红蛋白测定 75

实验13红细胞渗透脆性实验 77

实验14血细胞计数 79

实验15血液凝固的影响因素 83

实验16红细胞凝集与人类ABO血型鉴定 85

实验17蛙心起搏点观察 87

实验18蛙类微循环的显微观察 90

实验19蛙心的期前收缩与代偿间歇 92

实验20离体蛙心灌流 95

实验21动脉血压的直接测定与影响因素 98

实验22交感神经对血管和瞳孔的作用 101

实验23人体动脉血压的间接测定及运动对血压的影响 103

实验24蛙心电图及容积导体的导电规律 106

实验25呼吸运动的调节 109

实验26胸膜腔内压的测定 112

实验27唾液、胰液和胆汁的分泌 114

实验28小肠吸收与渗透压的关系 117

实验29胃肠运动的直接观察 118

实验30离体小肠平滑肌的生理特性 120

实验31瘤胃内容物的显微观察 123

实验32离体小肠的吸收实验 124

实验33小鼠能量代谢的测定 127

实验34损毁下丘脑对家兔体温的影响 131

实验35影响尿液生成的因素 134

实验36肾小球血流的观察 137

实验37胰岛素、肾上腺素对血糖的影响 139

实验38摘除肾上腺对动物应激的影响 140

实验39甲状腺对蝌蚪变态发育的影响 142

实验40摘除甲状腺对动物的影响 143

实验41睾酮对雏鸡第二性征发育的影响 145

实验42乳山羊排乳反射 146

第三部分综合实验 149

实验43蟾蜍低级中枢、神经-肌肉接头及肌肉疲劳时间的测定 149

实验44雄激素不同用药途径对雏鸡第二性征及红细胞数、血红蛋白含量的影响 151

实验45兔肝门静脉及后腔静脉血管瘘管安装技术 153

附录 156

Ⅰ常用溶液、药物的配制与使用 156

1常用生理盐溶液的成分与配制方式 156

2消毒液、洗液的配制 158

3脱毛剂的配制 159

4特殊试剂的配制与保存 159

5常用血液抗凝剂的配制及使用 160

6常用麻醉药物剂量 161

Ⅱ常用实验动物的生理指标 162

1常用实验动物的一般生理常数参考值 162

2常用实验动物血液学主要生理常数 163

3常用实验动物白细胞分类计数参考值 163

主要参考文献 164